（ 1 ）问题：工作结束之后不能再次开始工作或正常关机。
原因：最常见的原因是打印机处于实时打印状态（ Data Log List 或 Realtime Report 状态），打印机可能缺纸、卡纸、被误操作为暂停或关机等。
解决方法：排除打印机故障，点击 < 仪器状态 >< （ 6 ） DPR 状态 > ，点击 ，按 Resume 继续打印，按 Cancel 取消打印操作。
（ 2 ）问题：是否每天定标就能保证结果稳定？
答：不一定，可能您在定标时并不是每天都新溶解定标液，因为定标液复溶后有一些项目不稳定，比如： TBIL 、 DBIL （见光分解）、 GLU （细菌分解）、酶项目（冰冻后复溶降解）。
解决方法：以上项目在定标时一定要新溶解一瓶定标液，至少溶解三十分钟，在一小时内测定完成。
（ 3 ）问题：病人输液时加入右旋糖苷影响总蛋白的结果吗？
答：影响。右旋糖苷存在血清中可引起轻度乳糜，双缩脲法测定总蛋白会使右旋糖苷形成沉淀及绿化合物而导致错误的结果，偏高的结果最多可以达到 20 克 / 升。
（ 4 ）问题：可以用总蛋白试剂测定尿或脑脊液中的蛋白吗？
答：不能。因为敏感度太低。应选用 OSR6170 （尿 / 脑脊液蛋白试剂盒）。
（ 5 ）问题：奥林巴斯水平 I 和水平 II 质控血清可以用在干化学的仪器上吗？
答：不能。常规的质控血清在奥林巴斯仪器上测定时被试剂稀释，而干化学的质控系统质控液直接加到干片上。相对于常规质控，干化学质控中的保护剂、添加剂、稳定剂的浓度相对较高。实际上，没有任何一种质控同时适用于干化学与湿化学。
（ 6 ）问题：可以用 CKMB 试剂盒测定 CKBB 吗？
答：理论上可以，但提供的标本中必须不含有 CKMB ，这些可以用电泳法来检查。
（ 7 ）问题： OSR6121 的葡萄糖试剂可以测定 CSF （脑脊液）中的葡萄糖吗？ 盛夏晚晴天歌曲
答：可以，因为与尿标本一样，都，都不含有蛋白质，但是前没有官方报道。
（ 8 ）问题：如何防止 ALT 对 LDH 的交叉污染？
答：在 ALT 试剂中加入终浓度为 5mmol/L 的 EDTA ，可以降低约 50% 的交叉污染（可降低至 14U/L 的 LDH ）。
（ 9 ）问题： EDTA 血浆影响法的肌酐吗？
答：影响。 EDTA 抑制肌酐与反应，使结果偏低。
（ 10 ）问题：高葡萄糖的标本影响法的肌酐吗？
答：与肌反应不特异，假肌酐如：酮体、抗坏血酸盐、丙酮酸盐、葡萄糖和尿酸都对 Jaffe 氏反应有明显的扰作用。通过调整 NaOH 与的浓度，调节反应温度与测量窗口，可以减低这些竟争反应，奥林巴斯改良的 Jaffe 法可以做到葡萄糖浓度达到 17mmol/L 没有干扰。
（ 11 ）问题：奥林巴斯 DBIL 直接胆红素试剂所测定结果是否包含△胆红素？
答：是。因为奥林巴斯 DBIL 直接胆红素试剂带有样品空白，可以扣除△胆红素的干扰。所
以有用户说结果太低，不是太低，是其它试剂的结果太高了。
五月的句子（ 12 ）问题：为什么 TP 总蛋白的试剂空白为负数？
答：在测定试剂空白时，因为当试剂 II 加入后，在副波长 660nm 的吸光度大于主波长 540nm 的吸光度。用双波长测定，试剂空白为负数。
（ 13 ）问题：为什么有些质控 CKMB 结果大于 CK ？
答：因为质控中有一些添加成份，可能动物组织（牛脑），此组织中含有 CKBB ，所以 CKMB 的结果大于 CK ，但不应大于 CK 的二倍。
（ 14 ）问题： APOA1/APOB 是依照 IFCC 还是 CDC 标准追踪的？
答：中国是最早是由卫生部老年病研究所根据美国疾病控制中心 CDC 引进的此项目，美国 CDC 的结果比国际卫生组织 WHO 低， APOA1 乘以 0.91 ， APOB 乘以 0.79 就与国内一致。一般欧州公司的产品都是 IFCC 标准的。
（ 15 ）问题：葡萄试剂可以测定尿标本吗？
答：可以。建议用已糖激酶法的葡萄糖试剂。葡萄糖氧化酶法的试剂会受尿中 Vc 的干扰。
（ 16 ）问题：为什么有时 HBDH 的结果大于 LDH ？ LDH opt 与 LDH IFCC 有什么关系？
答：从某种意义上讲， HBDH 是 LDH 的一部分，但是可能由于方法学（底物、缓冲液、 PH 值等）的不同，会出现 HBDH 的结果大于 LDH ，如果 LDH 是 opt 法就没有这种现象。 LDH opt 是欧洲的方法，底物是丙酮酸。 LDH IFCC 的底物是乳酸，两者的正常值范围相比 LDH opt 比 LDH IFCC 大约高 2.2 倍。
（ 17 ）问题：新换了一个试剂，有反应曲线、因数是正确的、方法学、读点、波长均无问题，结果是“ 0 ”，为什么？
答：在参数中 Correction Factor A 常规下是： 1.0000 ，不小心被改为了 0 。
（ 18 ）问题：新换了一个厂家的肌酐试剂，重新定标后，结果均为 1500 多，是何种原因？
答：在参数中 Correction Factor B 常规下是： 0.0000 ，不小心被改为了 1500 。
（ 19 ）问题：经常丢试剂，但仅限某一项目，原因是什么？
答：最常见的原因是您没有使用原厂的试剂瓶，国产的试剂瓶的形状可能不规则，在取试剂的过程中试剂针碰到试剂瓶的瓶口，就会报警设有试剂。
（ 20 ）问题：给一新项目定标时，报警 ACAL incomplete ，为什么？
答：最可能的有以下几种原因：
① 定标液的位置不正确；
② 定标液所用的样品杯太小、太低，不能被仪器探测到（比如有些用户用离心管）；
③ 试剂量不足，试剂 I 或试剂 II 任何一瓶试剂小于 2ml （旧版）或低于报警测试数目（新版）；
④ 没有定标申请而放入空白（蓝）和 / 或定标（黄）架子。
.oppo手机怎么截屏（ 21 ）问题：新上了一个实验项目，定标不通过，报 Calibration Error ，是什么原因？
答：在定标过种中如果有任何报警，将会定标失败：
① 在定标过程中定标液不足；（ # ）
② Rate 法的项目线性不好或范围设置不正确；（ * ）
③ 试剂空白超出所设定的范围或波长设定错误；（ Y 、 y 、 U 、 u ）
④ 在 P-B-I 定标参数中，因数范围过窄，先报 Calibration Factor Over Range ，后报 Calibration Error 。
（ 22 ）问题：如果测定的标本特别多，如何给一个项目设定多瓶试剂？
答：奥林巴斯的生化分析仪最多可以给一个项目设定九瓶试剂：点击 < 仪器状态 > < （ 0 ）试剂状态 > ，先设一瓶试剂，再用光标选定一个空位置，点 后，选定项目、瓶子的规格，退出后，最后设定的为第一瓶试剂，以前的为第二瓶试剂，依此类推。
智能手机省电方法（ 23 ）问题：经常发现某一种试剂用的特别快，比如早上检查有 100 个 TP 试剂，做四、五十个肝功后仪器就报警没有试剂了，可能是什么原因？
答：在 P-Y-A 中，最下面是 LIH Reagent Test Name ：您一定是选定的此项目，它的意义是， LIH 的测定与此项目共用一瓶试剂，但这个地方的误选，仪器不会了生错误而吸此项目的试剂，在另外一个画面 P-Y-C （ Round ）中，LIH Measure ：中默认是“ Selected ”，被不小心改成了“ ALL ”，也就是说您让仪器每个标本都做 LIH （血清信息），用的是您所选定的试剂。
（ 24 ）问题：如何设定奥林巴斯带样品空白的 TBIL/DBIL ？
答：按以下六步设定实验参数：
1 ． 首先，在 [Parameter]-[Common Test Parameter]-[Test Name] 编 TBIL 与 DBIL 的实验名称，然后在 91 号与 92 号编 TBILb 与 DBILb （总胆红素与直接胆红素的空白实验）
2 ．其次，在 [Parameter]-[Specific Test Parameter] 中，编辑 TBIL 与 91TBILb 的参数（详见试剂盒内的说明书）， DBIL 与 92DBILb 的参数。请注意 TBIL 与 91TBILb 的参数
要完全一样， DBIL 与 92DBILb 的参数要完全一样。
好听的流行歌曲推荐3 ． [Parameter]-[Inter-Related Tests]-[Sample Blank] 中，选 Color Test （颜实验）为 TBIL 与 DBIL ， Blank Test[ 空白实验 ] 为 91TBILb 与 DBILb 。
4 ． [Parameter]-[Calibration]-[Calibration Specific] 中，选 TBIL 与 DBIL 为 AB 定标方式， 91TBILb 与 92DBILb 为 MB 定标方式， Factor 为 1.0000 。
5 ．设试剂位： TBIL/DBIL 为红盖， TBILb/DBILb 为白盖，共设定了四个试剂位。
6 ． [User]-[Calibration] 中， TBIL 与 DBIL 两点定标， TBILb 与 DBILb 空白定标。
（ 25 ）问题：新设定一个计算实验后，仪器不能正常工作，在退出时显示“ LIH Reagent Test No./Calculated Test No. Miss Match ” ，是何原因？ 一个男人爱你的表现
答： 在 P-Y-A 中，最下面是 LIH Reagent Test Name ：您一定是选定的此项目，这个地方的默认为 96 ： LIH 。
（ 26 ）问题： 新设定一个计算实验后，仪器不能正常工作，在退出时显示“ Total Sample:
Item ” , 是何原因？
答：在 P-I 中， SV （标本量） +DIL VOL （吐水量） +R1 （试剂 I ） +DIL VOL （吐水量） +R2 （试剂 II ） +DIL VOL （吐水量）；在 AU400/600/640 应在 150-550 微升之间，在 AU2700/5400 应在 120-440 微升之间。
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