灵芝多糖类成分及其生物活性研究进展
灵芝多糖类成分及其生物活性研究进展摘要：灵芝是常用的名贵中药材，药用历史悠久，药用价值高。多糖类成分是灵芝（赤
芝Ganoderma lucidum和紫芝G. sinense）中重要的生物活性成分之一，具有免疫调节、抗肿瘤、保肝、抗氧化、降血糖、心血管系统和神经保护等作用，具有潜在的开发应用价值。通过对近年来国内外灵芝多糖的结构特征、生物活性以及潜在作用机制的相关文献进行归纳总结，为明确灵芝多糖的现代药用价值提供基础，为灵芝多糖作为药物和辅助性功能食品的开发提供参考和借鉴。
灵芝Ganoderma属于担子菌纲多孔菌科真菌，为我国传统的名贵中药，有着悠久的药用历史。与人参、何首乌、冬虫夏草并称为“四大仙草”。据《神农本草经》记载，将灵芝按颜划分为赤、黑、青、白、黄、紫芝6种，均被列为上品。谓其“气味苦平、无毒。久食轻身不老，延年神仙”。《中国药典》2020年版规定赤芝Ganoderma lucidum (Leyss. ex Fr.) Karst.和紫芝G. sinense Zhao, Xu et Zhang的干燥子实体为灵芝的正品[1]。现代药理研究表明，灵芝具有广泛的生物活性，能够用于预防和各种内科疾病。灵芝的化学成分丰富，主要包括多糖、三萜、核苷酸、甾醇、甾体、多肽、脂肪酸和氨基酸等[2]。灵芝多糖作为灵芝中重要的生物活性成分之一，具有免疫调节、抗肿瘤、保肝、抗氧化、降血糖、心血管系统和神经保护等生物活性。及的结构
灵芝常见形态为高度木质化的子实体（fruiting bodies），发育后期弹射释放的种子收集后呈粉状，称为孢
子粉（spores），孢子萌发形成菌丝体（mycelium），菌丝继续发育成熟则为子实体，这3种形态即为灵芝的生长周期。以灵芝的子实体、孢子粉、菌丝体和发酵液为原料，从其中均可提取多糖。灵芝多糖的提取工艺常用热水提取法[3]，而针对细胞壁的多糖则常采用酸
提[4]和碱提法[5]。随着提取手段的发展，为了获得更高提取效率，新的提取方法逐渐出现，如微波提取[6]、超声提取[7]和酶辅助提取[8]等，以上方法可以提高多糖得率。提取后的灵芝多糖经浓缩、分级醇沉[9]和除蛋白等步骤，再通过离子交换柱谱和凝胶柱谱等技术进行组合分离，最终得到均一多糖，如图1所示。这些工作对灵芝多糖的后续深入研究提供了有效助力。目前，针对灵芝多糖的研究主要集中在赤芝和紫芝，有学者将2种灵芝多糖进行对比研究以期得到二者结构特征及药理活性的联系与区别。
本文通过对近年来灵芝多糖的研究进行归纳和总结，综述灵芝多糖的提取分离、结构特征和生物活性研究进展，以期为灵芝多糖的深入研究及开发提供一定借鉴与参考。
1  灵芝多糖的结构特征
多糖是灵芝中一类极为重要的生物活性物质。均一灵芝多糖的结构特征包括：单糖组成的种类较糖苷键连接组成；杂多糖主要以葡萄糖（Glc）、半乳糖（Gal）组成，还含有木糖（Xyl）、甘露糖（Man）、阿拉伯糖（Ara）、鼠李糖（Rha）、岩藻糖（Fuc）、氨基糖等，通过α- 或β-糖苷键相连。均一灵芝多糖的结构特征与其生物活性密切相关。
1.1  灵芝多糖的相对分子质量
多糖相对分子质量的测定方法主要包括：高效凝胶渗透谱法（high performance gel permeation chromatography，HPGPC）、高效凝胶过滤谱法（high performance sizeexclusion chromatography，HPSEC）、高效液相谱法（high performance liquid chromatography，HPLC）、基质辅助激光解析电离飞行时间质谱法（matrix-assistedlaser analytical ionization time-of-flight mass spectrometry，MALDI- TOF-MS）及一些物理方法（超滤过法、超离心法、沉降法、黏度法、光散射法等）。目前，从赤芝中分离得到均一多糖相对分子质量分布范围为1.93×103～2.50×106；从紫芝中分离得到均一多糖相对分子质量分布范围为2.87×103～1.86×106。从赤芝子实体中分离得到一个葡聚糖GL4-2，采用光散射法测定其相对分子质量为1.95×105[10]。从赤芝子实体中分离得到1个水溶性的糖肽GLPCW-II，通过HPLC法测定其相对分子质量为1.20×104[13]。2个杂多糖（PL-1、PL-4）和1个葡聚糖（PL-3）均从赤芝的子实体中分离得到；采用HPSEC方法测定多糖PL-1、PL-3和LP-4的相对分子质量分别为8.30×103、6.30×104和2.00×105[14]。1个新颖均一杂多糖（GSPB70-S）从紫芝中分离得到，采用HPGPC法测定其相对分子质量为2.87×103[33]。
1.2  灵芝多糖的单糖组成
单糖组成分析通常先通过酸水解的方法将多糖水解成单糖，以标准单糖为对照，水解产物通过衍生化后
采用气相谱（gas chromatography，GC）或HPLC的方法进行定性、定量分析。灵芝多糖的单糖组成种类丰富，但主要由Glc和Gal组成，此外还含有Xyl、Man、Ara、Rha、Fuc）葡萄糖醛酸（GlcA）、葡萄糖胺（GlcN）等。1个中性多糖（GP-1）和1个酸性多糖（GP-2）从赤芝子实体中分离得到，采用PMP柱前衍生-HPLC法分析表明GP-1和GP-2主要由Glc和Gal组成，还含有少量的Man、Rha、Fuc。在此基础上GP-2还含有少量的GlcA[16]。从赤芝子实体中分离得到多糖（LZJ-0.15），采用PMP柱前衍生-HPLC法对其单糖组成进行分析，结果表明LZJ-0.15的单糖组成主要为Glc，其摩尔比为92.3%，另外含有少量的GlcA、Man和GlcN[23]。从紫芝中分离得到均一杂多糖（GSPB70-S），采用阴离子交换谱-积分脉冲安培检测法（high-performance anion-exchange chromatography with integral pulseamperometric detection，HPAEC- IPAD）分析GSPB70-S的单糖组成，结果表明GSPB70-S由Glc、GlcN、Man和Gal组成，分子摩尔比为12.90∶3.70∶2.26∶1.00 [33]。从紫芝菌丝体中得到的均一多糖
（LZ1），其水解产物经GC分析，结果表明LZ1由Rha、Fuc、Man、Glc、Gal和Ara组成，分子物质的量比为0.94∶0.50∶1.68∶26.91∶4.80∶17.12[35]。
1.3  灵芝多糖的化学结构
一般来说，多糖的化学结构解析通过甲基化、高碘酸盐氧化、Smith降解及1D/2D核磁共振谱（nuclear
magnetic resonance，NMR）分析。灵芝多糖由均多糖和杂多糖2大类组成，均多糖以葡聚糖为主，杂多糖的结构则比较复杂。杂多糖（LZ-C-1和LZ-D-1）从赤芝子实体中分离获得。LZ-C-1主β-D-Glcp-(1→和→3)-β-D-Glcp-(1→残基组成，支链则是由末端残基β-D-Glcp-(1→和α-L-Fucp-(1→组成，分别连接于→4,6)-β-D-Glcp-(1→和→2,6)-α-D- Galp-(1→残基上。LZ-D-1主链由→6)-α-D-Galp- (1→和→2,6)-α-D-Galp-(1→残基组成，支链则是由末端残基α-L-Fucp-(1→组成，连接于→6)-α- D-Galp-(1→残基的O-2位[11-12]。水溶性的糖肽GLPCW-II从赤芝子实体中分离得到，含有8%蛋白质。由Glc、Fuc和Gal组成的杂多糖，主链由→6)-α-D-Galp-(1→和→3)-α-D-Glcp-(1→残基组成，支链则是由末端残基α-L-Fucp-(1→组成，连接于→6)-
α-D-Galp-(1→残基的O-2位[13]。从赤芝的孢子粉中分离得到1个水溶性葡聚糖（GLSWA-I）。GLSWA-I的主链是由→3)-β-D-Glcp-(1→、→4)- β-D-Glcp-(1→和→6)-β-D-Glcp-(1→残基组成，1条支链由末端残基β-D-Glcp-(1→组成，连接于→3)- β-D-Glcp-(1→和→4)-β-D-Glcp-(1→残基的O-6位和→6)-β-D-Glcp-(1→残基的O-4位。另一条支链由末端残基β-D-Glcp-(1→组成，连接于支链→6)-β-D- Glcp-(1→残基的O-4位[15]。均一多糖（GLP20）从赤芝的子实体中分离得到[17-19]。GLP20是由→3)- β-D-Glcp-(1→连接为主链。→6)-β-D-Glcp-(1→连接为支链的葡聚糖，其主链与支链的比例为1∶3。富含半乳糖的杂多糖（GLP-2）从赤芝的液体发酵液中分离得到[20]。GLP-2是由→4)-α-D-Galp-(1→连接为主链，→6)-α-D-Manp-(1→、→4)-β-D-Glcp-(1→、α-L-Arap-(1→和α-L-Rhap-(1→为支链，连接于→4)- α-D-G
alp-(1→残基的O-6位。从赤芝子实体中获得的多糖肽（GL-PPSQ2）多糖含量达87.17%[24]。GL-PPSQ2的主链由→3)-β-D-Glcp-(1→残基构成，每四个→3)-β-D-Glcp-(1→在O-6位连接一个长支链，该支链由α-D-Glcp-(1→、→4,6)-β-D-Glcp-(1→、→4)-β-D-Glcp-(1→和6)-β-D-Glcp-(1→依次相连构成。一个新颖的葡聚糖（GLSB50A-III-1）从赤芝的子实体中分离得到[31]。GLSB50A-III-1主链是由→3)-β-D-Glcp-(1→、→4)-β-D-Glcp-(1→和→6)-β-D- Glcp-(1→残基组成。支链则是由末端残基β-D-Glcp-(1→组成，连接于→3)-β-D-Glcp-(1→和→4)- β-D-Glcp-(1→残基的O-6位。葡聚糖（WGLP）从赤芝子实体中分离得到[32]。WGLP的主链是由→3)- β-D-Glcp-(1→残基组成，支链则是由残基→6)-β-D- Glcp-(1→组成，连接于主链末端→3)-β-D-Glcp-(1→残基的O-6位。赤芝中分离得到均一多糖可能的重复单元结构见图2。
新颖的均一杂多糖（GSPB70-S）从紫芝中分离得到[33]。GSPB70-S的主链由→3)-β-D-Glcp-(1→、→4)-α-D-Manp-(1→和→4)-α-D-GlcpNAc-(1→残基组成。支链由β-D-Glcp-(1→、α-D-GlcpNAc-(1→和→4)-α-D-Galp-(1→残基组成。水溶性均一多糖（GSCW30E-20E）从紫芝的子实体中分离获得[36]。GSCW30E-20E是以→3)-β-D-Glcp-(1→连接为主链，每3个→3)-β-D-Glcp-(1→残基通过β-(1,6)-糖苷键连有1个β-D-Glcp-(1→残基为支链的葡聚糖。葡聚糖（GSP-2）从紫芝的子实体中分离得到[37]。GSP-2的主链是由→4)-β-D-Glcp-(1→和→6)-β-D- Glcp-(1→残基组成，支链由末端残基β-D-Glcp-(1→
2  灵芝多糖的生物活性及其潜在作用机制
2.1  免疫调节与抗肿瘤
灵芝多糖具有双向调节免疫的作用[38-40]，能够直接或间接激活免疫细胞增殖分化，上调各种生长因子、细胞因子以及抗体的表达，强化各类免疫细胞间密切的相互作用，提高自身免疫（图4），相关分子机制如图5所示。另一方面，灵芝多糖能够抑制过度激活的免疫系统造成的自身免疫性损伤，提供有序的免疫内环境，维持免疫稳态。
Liu等[41]报道，在排除多糖本身含有的内毒素情况下，50 μg/mL紫芝多糖（polysaccharides from G.sinense，GSP）显著上调外周血单核细胞Toll样受体4（Toll-like receptor 4，TLR4）的表达并激活丝裂原活化蛋白激酶（mitogen-activated protein kinase，MAPK）通路，触发单核细胞的免疫应答。Liu等[42]报道给小鼠sc赤芝多糖（polysaccharides from G.
lucidum，GLP）1 mg/mL第21、28和35天，免疫系统出现高效价的免疫球蛋白
G（immunoglobulin G）抗体、强增殖的脾脏免疫细胞及细胞因子分泌能力、显著活化的效应T 细胞等免疫强化现象。巨噬细胞是机体固有免疫防御的重要成员，其主要功能是吞噬、降解衰老细胞及其碎片和外来病原体，协调炎性反应过程[43]。Han等[34]发现从紫芝中提取的多糖（GSP-4）可显著促进免疫调节生物标志物的产生，并促进巨噬细胞活动。Wei等[44]报道，与未经GLP预处理的巨噬细胞相比，GLP处理组巨噬细胞表面标志物表达增加，结合和内吞能力增强。灵芝多糖还能增强自然杀伤细胞（nat
ural killer cells，NK）的活性[45-46]。Yang等[47]研究表明GLP作用于NK-92细胞后，自然杀伤组2成员D（natural killer group 2 member
D，NKG2D）0.05），说明GLP可能通过促进NK细胞NKG2D受体的表达，激活下游的DNAX相关蛋白10（DNAX- associated protein 10，DAP10）/磷脂酰肌醇3-激酶（phosphoinositide 3-kinase，PI3K）/细胞外调节蛋白激酶（extracellular regulatedprotein kinases，ERK）通路，介导其细胞毒作用。Xiao等[48]发现NK细胞与400 μg/mL灵芝β-葡聚糖结合后启动免疫级联反应，刺激活化各类免疫细胞，增强机体免疫功能。
Cao等[49]研究结果表明剂量为0.8、3.2和12.8 μg/mL的GLP能够上调小鼠树突状细胞（dendritic
人T细胞与非T细胞体外共培养时，会发生淋巴细胞增殖，称为自体混合淋巴细胞反应（autologous mixed lymphocyte reaction，AMLR）。Lei等[52]研究发现，GLP能够促进小鼠被环孢素抑制的脾细胞自发增殖，同时，100～800 μg/mL的灵芝多糖能促进脾细胞发生AMLR，作用与胸腺肽相似；另一方面，研究结果显示GLP（50～800 μg/mL）能促进同种异型抗原刺激的小鼠混合淋巴细胞反应（mixed lymphocyte reaction，MLR），并能逆转小剂量环孢素（0.01μg/mL）对MLR的抑制作用，使其接近正常水平。灵芝多糖还可促进混合的Th1/Th2/Tregs等辅助细胞性免疫反应。Xiang等[53]报道，灵芝多糖能促进T淋巴细胞增殖，并在质量浓度为160
μg/mL时增加IL-12和γ干扰素（interferon-γ，IFN-γ）的分泌，促进Th1的转化和成熟进程。Li
等[54]发现荷瘤小鼠注射GLP 4周后，瘤内Tregs比值降低，而瘤中CD4+T细胞总数的百分比稳定，提示GLP影响T细胞向Tregs极化，干预肝癌进展。
肿瘤免疫逃逸是指恶性肿瘤细胞通过各种机制避开免疫系统的识别和攻击而生长和转移的现象。肿瘤周围聚集有免疫细胞和免疫抑制细胞，免疫抑制细胞分泌免疫抑制因子介导肿瘤细胞逃避机体免疫系统的监查[55-56]。研究表明，灵芝多糖可能是通过介导机体自身免疫发挥抗肿瘤活性。
Li等[57]将GLP和GSP分别与乳腺癌4T1细胞单独作用，发现二者对4T1细胞没有杀伤能力，而当二者培养的RAW264.7细胞的上清液处理4T1细胞时，肿瘤细胞活力明显下降（P＜0.05）；经多糖处理6 h后，肿瘤细胞迁移率显著降低（P＜0.001），提示多糖对4T1细胞的转移有抑制作用。Wang等[58]研究表明，质量分数为200 mg/kg的GLP对胶质瘤的大小和中位生存期无显著的剂量依赖性；此外，对细胞毒细胞（cytotoxicT-lymphocytes，CTLs）、NK细胞和DCs等免疫细胞进行测定，发现GLP能够促进CTLs浸润肿瘤组织，增强NK细胞的杀伤能力，加速DCs的成熟，提示GLP的抑瘤作用不依赖于多糖含量，可能是通过抑制肿瘤微环境所创造的免疫抑制环境，使肿瘤细胞的生长受限最后萎缩凋亡。GLP在募集肿瘤浸润效应T细胞的过程中，可能对免疫抑制细胞产生相同的趋化作用，使得肿瘤逃逸免疫系统的识别与清除。
程序性死亡配体1（programmed death ligand-1，PD-L1）是PD-1（programmed death-1）的配体，两者结合能启动免疫抑制信号，抑制免疫细胞活性，减少免疫因子的分泌，甚至耗竭免疫细胞。正常生理条件下，该反馈应答有助于构建良好的免疫稳态环境。肿瘤细胞表面PD-L1异常高表达，这是肿瘤顺利逃避免疫清除的重要原因之一。He等[59]研究发现，质量浓度为1～5 mg/mL的GLP抑制信号传导与转录激活因子（signal transducer and cctivator of transcription，STAT3）磷酸化，下调PD-L1的表达。此外，免疫检查点阻断模型中，GLP 增强了PD-L1抗体的效力，缓解肿瘤带来的体质量下降、脾脏萎缩等并发症。
灵芝多糖对调控细胞生命周期过程中的关键蛋白和基因等有显著影响，因而能够介导肿瘤细胞的凋亡。Bai等[60]发现GLP通过上调Bcl-2相关X蛋白（Bcl-2 associated X protein，Bax）、磷酸化细胞外调节蛋白激酶（phospho-extracellularregulated protein kinases，P-ERK）和裂解Caspase-3的表达，下调B细胞淋巴瘤-2（B-cell lymphoma-2，Bcl-2）、磷酸丝氨酸/苏氨酸激酶1（phosphoserine/threonine kinase 1，p-Akt1）和环氧合酶-2（cyclooxygenase-2，COX-2）的表达，实现对结肠瘤细胞的凋亡。同样地，宫颈癌U14荷瘤小鼠喂食灵芝多糖后，体内肿瘤组织氧化应激得到改善，Bcl-2和COX-2的含量显著降低[61]。
综上，灵芝活性多糖在免疫应答过程中起着重要的调节作用，包括但不限于通过淋巴细胞和髓
样细胞等免疫细胞激发对肿瘤、病毒、细菌和真菌病原体的免疫防御。作为一种有效的辅助手段，天然多糖与免疫效应细胞上多个受体的相互作用还需要深入研究多糖识别的分子机制，以进一步了解天然多糖是如何与免疫效应细胞上的多个受体相互作用的。
2.2  保肝
肝脏损伤是医学界公认的不能完全治愈的流行性疾病之一，灵芝多糖在保护肝脏方面有良好的功效[62-64]。
Hong等[65]在高脂饮食致肝脏非酒精性脂肪变性小鼠模型中发现GLP能够增加多种抗氧化酶的活性；此外，剂量为400 mg/kg的GLP通过改善血红素加氧酶-1（heme oxygenase-1，HO-1）信号通路，降低肿瘤坏死因子-α（tumor necrosis factor-α，TNF-α）的表达水平，从而起到对抗肝脏脂肪变性、氧化应激和炎症反应的作用。Chen等[66]用CCl4诱导的肝损伤小鼠模型，发现剂量为100 mg/kg的GLP能够显著抑制血清丙氨酸转氨酶（alanine transaminase，ALT）和天冬氨酸转氨酶（aspartate aminotransferase，AST）活性及肝组织的一氧化氮合酶（nitric oxide synthase，NOS）和细胞素P4502E1（cytochrome P4502E1，CYP2E1）表达，减轻肝损伤水平，改善肝功能。
Gao等[67]和Liu等[68-69]研究发现，经GLP通过调节核因子-κB（nuclear factor kappa-B，NF-κB）通路引起下游信号分子的改变，如核因子κB抑制蛋白（inhibitor of NF-κB，IκBα）表达的明显增加和p-p65
相应地降低，最终上调肝保护因子表达水平和下调致肝损伤因子表达水平。Zhong等[70]发现，GLP通过法尼醇X受体（farnesoid X receptor，FXR）-蛋白酪氨酸磷酸酶
2（src homology-2 domain-containing phosphatase，SHP2）/成纤维细胞生长因子（fibroblast growth factor，FGF）途径，降低胆固醇调节元件结合蛋白1（sterol regulatory element bindingprotein 1c，SREBP1c）、凋亡相关因子FAS和乙酰辅酶A羧化酶（acetyl-CoA carboxylase，ACC）的表达，降低油酸和棕榈酸诱导的HepG2细胞和原代肝细胞的脂滴积聚和三酰甘油（triacylglycerol，TG）含量，达到抑制脂肪酸合成的作用。
由此可见，灵芝多糖可通过抗自由基脂质过氧化、减轻肝脏损伤炎症反应、提高肝脏抗氧化能力等途径来发挥保护肝脏的作用。
2.3  降血糖
糖尿病是一组因胰岛素绝对或相对分泌不足以及靶组织细胞对胰岛素敏感性降低引起蛋白质、脂肪和电解质等一系列代谢紊乱综合征，高血糖为其标志性的特征[71]。现代药理研究表明，灵芝多糖在调节血糖水平和抗糖尿病机制中存在众多靶点且效果显著的特点[72-74]。
Zhu等[75]指出，大鼠的给药剂量为200或400 mg/kg灵芝多糖能上调胰腺十二指肠同源盒
1（pancreatic-duodenal homeobox 1，PDx-1）、Bcl-2 mRNA的表达，下调Bax、诱导型一氧化氮合酶（inducible nitric oxide synthase，iNOS）和Caspase-3的表达，从而抑制β细胞的凋亡，促进β细胞的再生，实现保护胰腺组织的作用。Xiao等[76]通过实验发现，给予2型糖尿病（diabetes mellitus type 2，T2DM）大鼠灵芝多糖（F31）1周后，F31（50 mg/kg）组和二甲双胍组空腹血糖（fasting serum glucose，FSG）明显低于模型组（P＜0.05、0.01）。2组空腹血糖下降持续6周。给药3周时，F31（25 mg/kg）组的FSG较模型组显著降低（P＜0.05）。
目前研究表明，灵芝多糖可能通过影响肠道菌的组成和功能来调节血糖水平、改善肠道屏障功能，发挥糖尿病的作用。Chen等[77]发现经GLP处理后，T2DM小鼠肠道益生菌丰度提高，降低了有害菌丰度，恢复肠道菌紊乱的氨基酸代谢、碳水化合物代谢、炎性物质代谢和核酸代谢。Xu等[78]报道，GLP可以改变肠道微生物的组成，减轻发生胰岛素抵抗的慢性炎症。
综上，灵芝多糖通过改善胰岛β细胞功能提高胰岛素作用、增强葡萄糖代谢和减轻胰岛素抵抗等作用，在降血糖和控制糖尿病方面有着独特的优势。
2.4  改善心血管系统作用
动脉粥样硬化会导致局部血栓形成，导致受影响动脉的部分或全部闭塞。血管平滑肌的炎症反应是动脉粥样硬化发生发展的重要因素之一。IL-1家族细胞因子参与调节炎症。Liang等[83]研究发现，GLP可降
低脂多糖诱导的人血管平滑肌细胞和小鼠胸主动脉中IL-1β的表达，提示灵芝多糖具有抗炎作用，可用于预防血管疾病和抑制炎症反应。
T2DM伴随的高血糖能够诱导糖基化终末产物（advanced glycation end-products，AGE）的形成，引起氧化应激和慢性炎症，继而诱发动脉粥样硬化的发生。另一方面，脂蛋白相关磷脂酶（lipoprotein associated phospholipase，LP-PLA2）具有促炎作用，对动脉粥样硬化斑块不稳定。Wihastuti等[84]给Wistar大鼠sc 3个不同剂量（50、150、300 mg/kg）的灵芝多糖。结果显示，与空白组相比，GLP对血管新生数量和脂质含量均有显著影响，提示灵芝多糖能够稳定动脉粥样硬化斑块，预防动脉炎症反应。Zhu等[85]通过研究发现，灵芝多糖能增加主动脉PI3K、磷酸化Akt（phospho-Akt，p-Akt）、内皮型一氧化氮合酶（endothelial nitric oxide
synthase，eNOS）和NO的水平，改善内皮依赖性主动脉舒张功能，提示该作用可能与激活
PI3K/Akt/eNOS通路有关。Li等[86]研究表明，灵芝多糖在体内对阿霉素所致的心脏损伤有保护作用，表现为抑制线粒体凋亡信号转导通路、维持心肌线粒体的结构和功能、减少心肌细胞的凋亡。转录因子Nrf2是调节HO-1等抗氧化基因转录的重要转录因子之一，Nrf2诱导小鼠双微体2（murine double minute 2，MDM2）表达的增加有助于维持线粒体膜电位稳定，抑制线粒体凋亡，保护细胞。Xu等[87]研究报道，GLP可以逆转阿霉素引起的NRF2表达的下降，促进NRF2的稳定存在，提示灵芝多糖可以作为阿霉素心脏毒性的潜在药物。
以上研究表明，灵芝多糖通过抑制血管损伤性炎症反应、增强血管舒张与收缩功能、维持心肌线粒体结构和功能、改善机体糖脂代谢等作用，一定程度地保护心脏，保持心脏的基本结构和功能，达到预防甚至心血管疾病的作用。
2.5  神经保护
神经系统疾病是由对中枢和外周神经系统产生负面影响的特殊病理过程引起的。众所周知，灵芝多糖对中枢神经系统的调节至少部分是通过其免疫调节活性来实现的[88]。Zhou等[89]报道，大鼠侧脑室注射灵芝孢子粉（2.0、4.0、8.0 g/kg）均保护海马免受氧化损伤。多项研究表明，灵芝多糖具有广泛的脑损伤保护作用，如改善阿尔茨海默病（Alzheimer’s disease，AD）、癫痫以及对卒中损伤的神经细胞保护作用[90-91]。
Ren等[92]通过体内外实验发现，经灵芝提取物处理后，经典的1-甲基-4-苯基-1,2,3,6-四氢吡啶（MPTP）小鼠模型的运动能力得到改善，同时黑质致密部中酪氨酸羟化酶的表达增加。在细胞实验中，灵芝提取物可以保护神经母细胞瘤对抗1-甲基-4-苯基吡啶（MPP+，1 mmol/L）的损伤作用，在孵育24 h时降幅最大。
Huang等[93]报道，经GLP后小鼠海马区5-乙炔基-2-脱氧尿苷/神经元特异性核蛋白（5-ethynyl-2-deoxyuridine/neuronspecific nuclear protein，BrdU/Neun）双阳性细胞数与赋形剂组小鼠相比明显增加，
提示GLP对神经细胞有保护作用；还发现GLP的APP/PS1小鼠与赋形剂的小鼠相比，β-淀粉样蛋白（amyloid β-protein，Aβ）面积显著减少，表明GLP减少了淀粉样蛋白沉积。Cai等[94]通过实验发现，GLP能够下调脂多糖或Aβ诱导的促炎细胞因子，促进抗炎细胞因子的表达，减轻炎症相关生理活动。小胶质细胞行为反应的调节与单核细胞趋化蛋白-1（macrophage chemoattractantprotein-1，MCP-1）和C1q基因的表达有关，而MCP-1在许多神经退行性疾病中均有过表达，揭示GLP对内毒素和Aβ诱导的神经炎症的调节作用，并提示GLP的神经保护功能可能是通过调节小胶质细胞的炎症反应和行为反应来实现的。Sun等[95]通过实验发现灵芝多糖能显著抑制H2O2诱导的神经细胞凋亡，提示灵芝多糖可抑制氧化应激诱导的神经细胞凋亡。
目前，大量实验研究表明，灵芝多糖确有明显的神经保护作用，对脑血管病、AD、帕金森病、癫痫等神经退行性疾病具有良好的临床应用前景，可以作为一种潜在的剂来提高神经元存活能力。
2.6  抗氧化
氧化应激是机体内环境超氧阴离子、过氧化氢以及羟自由基等活性氧（reactive oxygen species，ROS）水平增加所致[96]。目前，已知多种疾病的发生、发展过程都与氧化应激密切相关[97]。灵芝多糖对不同动物模型的抗氧化和清除自由基作用可能与其免疫调节、抗肿瘤、降血压、降血糖、脑保护、肝脏保护、心血管保护、肾脏保护和延缓衰老等药理机制有关[98]。
服用GLP显著提高了健康研究参与者的总抗氧化能力、抗氧化酶活性，并改善了肝脏状况。Zhong等[100]通过建立小鼠体内肾缺血再灌注损伤模型和体外缺氧/复氧模型发现，与假手术组相比，肾缺血再灌注后总抗氧化能力、抗氧化酶活性均显著升高。然而，在缺血和再灌注前给予灵芝多糖肽可改善肾功能，表现为降低血尿素氮和肌酐水平，形态学损害明显减轻。另
外，Zhong等[100]考察灵芝多糖肽对氧化应激影响，与假手术组相比，模型组髓过氧化物酶、丙二醛（malondialdehyde，MDA）水平显著升高，超氧化物歧化酶（superoxide dismutase，SOD）、过氧化氢酶、谷胱甘肽（glutathione，GSH）、谷胱甘肽过氧化物酶（glutathione peroxidase，GSH-Px）活性显著降低，而灵芝多糖肽则逆转了模型组的变化
（P＜0.01），显著抑制肾缺血再灌注氧化损伤。
Hu等[101]建立脂多糖诱导的炎症巨噬细胞模型和肠样Caco-2细胞/巨噬细胞共培养炎症模型发现，质量浓度为160 μg/mL灵芝多糖显著降低（P＜0.01）脂多糖诱导的促炎细胞因子、ROS水平，抑制COX-2的表达（P＜0.01）。Zheng等[102]通过体外细胞研究表明，GLP对H2O2诱导的MRC-5细胞氧化应激有积极的保护作用，并能显著降低细胞内ROS水平，显著提高细胞存活率。
剧烈的体育锻炼往往与各种组织中自由基和ROS的产生增加有关，这可能会弱化机体抗氧化防御系统的能力[103]。Zhao等[104]报道GLP各剂量组（50、100、200 mg/kg）能够增强力竭运动诱导的小鼠骨骼
肌中抗氧化酶活性，降低MDA含量。Luo等[105]则研究了GLP对运动性小鼠肝脏

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